1.《Аспергиллы виды. повсеместно распространены в наземных средах обитания из-за их способности распространяться по всему миру с воздушными потоками и расти на многих различных субстратах. Эти грибы обычно выделяют из почвы, особенно из растительной подстилки. Действительно, многие виды Aspergillus могут в изобилии расти как сапрофиты на разлагающейся растительности и приспособлены к деградации сложных растительных полимеров ( Bennett, 2010 ).

2. Первым признаком заражения аспергиллами у взрослых является беспокойство, за которым следуют слабость и паралич. В искусственно зараженных семьях пчелы начинают переползать и пытаются покинуть улей на лету, обычно погибая на значительном расстоянии ( Burnside, 1930 ). Это можно интерпретировать как самоизоляционное поведение, направленное на ограничение передачи болезни внутри колонии ( Stockmaier et al., 2021)

3. Фактически было продемонстрировано, что пчелиная пыльца является субстратом, стимулирующим продукцию охратоксина А A. ochraceus ( Medina et al., 2004 ); этот микотоксин обладает высокой цитотоксичностью и, как сообщается, обладает инсектицидным действием ( Boguś et al., 2021).). Несколько исследований показали загрязнение меда. В Северной Италии A. flavus и A. japonicus были идентифицированы при прямом секвенировании ДНК, содержащейся в меде ( Bovo et al., 2020 ). В Турции A. flavus и A. fumigatus были обнаружены соответственно в 4,4 и 6,4% исследованных образцов меда ( Dümen et al., 2013 ). Виды A. flavus, A. niger, A. fumigatus, A. candidus, A. terreus, A. versicolor, A. ochraceus были обнаружены в ходе исследования, проведенного на 50 образцах меда в Словакии ( Kačániová et al., 2009 ) . , в то время как первые два были обнаружены в пробах меда, проанализированных в Бразилии ( Pires et al., 2015).). В последней стране также сообщалось, что A. flavus встречается в меде безжальной пчелы Melipona scutellaris ( Gois et al., 2010 )."

5. Недавние исследования показали, что тонкая фенотипическая вариация между загадочными Aspergillus виды могут иметь серьезные последствия в связи с их патогенностью по отношению к пчелам, что подчеркивает важность точной идентификации изолятов ( Foley et al., 2014 ).
Другие членистоногие, связанные с пчелами, считаются переносчиками видов Aspergillus . Aspergillus niger и A. flavus были обнаружены на поверхности самок Varroa destructor (Parasitiformes, Varroidae), что свидетельствует о том, что этот паразитический клещ может быть переносчиком их распространения в ульях ( Benoit et al., 2004 ). Вопрос о том, может ли сам V. destructor быть поврежден этими грибами, требует дальнейшей оценки, учитывая, что A. flavus ингибирует размножение другого паразитического клеща, Imparipes apicola (Acariformes, Scutacaridae) ( Cross and Bohart, 1992) .). Другим потенциальным переносчиком A. flavus является восковая моль Galleria mellonella (Lepidoptera, Pyralidae), которая является распространенным вредителем пчеловодов. Действительно, штамм A. flavus , разлагающий полиэтилен , был недавно выделен из кишечника G. mellonella , что свидетельствует об определенной степени пластичности этого вида грибов с точки зрения адаптивной способности к различным условиям pH, от кислого кишечника пчел до чрезвычайно щелочной кишечник чешуекрылых ( Zhang et al., 2020 ). Более того, A. flavus и A. fumigatus были выделены из мертвых взрослых особей и живых личинок видов Vespula , хорошо известных хищников пчел (Глейр и др., 1996 ; Куинн и др., 2018 г.; Loope et al., 2019 ), предполагая вероятный механизм передачи грибковых спор от пчел к осам.
покрывает белый мицелий. Перед образованием мумии обычно возникает окрашенное спороношение, начинающееся с задней части тергитов брюшка ( Burnside, 1930 ).

6. ассоциация нескольких видов Aspergillus с пчелами и продуктами пчеловодства, особенно с пыльцой, не удивительна. Пыльца представляет собой вход для грибковых патогенов в улей. Действительно, споры Aspergillus spp. могут загрязнять пыльцу на растениях ( Sainger et al., 1978 ; Gilliam et al., 1989 )

7. После сбора, хранения и потребления пчелами эти споры достигают кишечника, который является основным местом заражения пчелиными патогенами ( Foley et al., 2014 ).

8. Согласно распространенной точке зрения, несколько видов Aspergillus считаются условно-патогенными микроорганизмами, которые могут инфицировать пчел на всех стадиях развития ( Foley et al., 2012 ).

9. Интересно, что заражение видами Aspergillus может вызывать симптомы, очень похожие на синдром коллапса колонии, впервые описанный в 2006 году, когда в улье не остается или остается очень мало взрослых пчел ( Burnside, 1930 ; Hamzelou, 2007 ; Leska et al., 2021 ).

10. роль факторов вирулентности в патогенезе Aspergillus spp. еще предстоит изучить, но возможно, что смертность личинок отчасти связана с токсичностью, а не с грибковой инвазией ( Foley et al., 2012 ). Действительно, более сильная вирулентность, проявляемая A. flavus в отношении медоносных пчел ( Foley et al., 2014 ), хорошо согласуется с большей токсичностью токсинов A. flavus по отношению к комарам по сравнению с A. niger и A. parasiticus ( Maurya et al. , 2011 ). Такие высокотоксичные и обильные токсины A. flavus , а также тот факт, что Aspergillus виды являются условно-патогенными микроорганизмами со слабой коэволюционной историей с пчелами, что может объяснить отсутствие генотипической изменчивости в популяциях медоносных пчел с различной устойчивостью, на что указывалось в недавних исследованиях ( Evison et al., 2013 , 2016 )"

11. Заражая насекомых-опылителей, Aspergillus виды может создать очень большой инокулят для заражения цветов и колонизации семян ( Klich and Chmielewski, 1985 ; Leger et al., 2000 ). Однако эта гипотеза о механизме расселения, использующем скачки хозяев между царствами, заслуживает более глубокого изучения.

12. Кроме того, виды Aspergillus выделяют гидролитические ферменты, которые играют роль в патогенезе и переваривании тканей хозяина. В частности, пектиназы и протеиназы являются важными факторами вирулентности, участвующими в колонизации растений-хозяев и насекомых соответственно ( Leger et al., 2000 ).
------------
Aspergillus - пчелы: динамическая симбиотическая ассоциация.

Andrea Becchimanzi
Andrea Becchimanzi1*Rosario Nicoletti,Rosario Nicoletti
1 Кафедра сельскохозяйственных наук, Неаполитанский университет имени Федерико II, Портичи, Италия
2 Совет по сельскохозяйственным исследованиям и экономике, Исследовательский центр оливок, фруктов и цитрусовых культур, Казерта, Италия

Не помню уже кто-то в смежной ветке писал, чтобы проверить на нозему, взял свежий подмор у уцелевших пчелосемей для анализа, но там не оказалось внутренностей, то есть кишки!
У кого какие мысли? Что за вредитель пожрал ливер пчёл?

Юрий дайте полные инициалы и контакты если возможно, ссылка не работает! Хочу посмотреть на её работы и публикации, прежде чем иметь дело и секвенировать ДНК!

Я же тебе дал ссылку на Настю, там у ней есть статьи и про назему.
А так ты должен своими словами описать все, а не таскать ссылки.

А ты пробовал сам открыть после вложения в сообщение?

Прикрепленное изображение: Открыть в новом окне

Скажу больше. Настя говорит, что они не раз наблюдали как семья выздоравливает без использования каких-либо препаратов и без лечения, когда условия становятся оптимальными. У них экспериментальная пасека стоит под окнами института. Но есть нюанс. Если условия ухудшаются, возможна повторная вспышка. Есть носители и выявить их можно только используя ПЦР. В латентный период спор обнаружить не удается.
С иммунитетом вообще все не просто. Они заражают отдельных пчёл в клеточках лошадиными дозами спор, скармливал их с сиропом пипеткой. Так вот некоторые заражаются, а некоторые нет. То есть вообще нет.

Вопрос не ко мне, но тут описывать нечего. И накаких специальных действий от пчеловода не требуется. В зиму идут пчелы из последнего расплода, то есть не работавшая пчела. Плюс после сокращения расплода после главного взятка появляются лишние пчелы, для которых тоже нет работы, но в отличии от первой половины лета, они не стремятся отделиться от семьи, а становятся долгоживущими, зимними пчелами.

Очень научное рассуждение, интересно где ты на лавочке это услышал?

То есть можно с трех дневной личинки выводить нормальных маток. И что же так не поступают пчеловоды при выводе маток, а стараются использовать для этого личинки только в течении первых суток.?

Какое это имеет отношения к зимним пчелам?

А ты подумай как это имеет вообще к любым пчелам.

Здесь хоть Андрей Бондарев и чудит иногда , но у него хоть есть и полезное, а ты как дежурный по клещу всегда вклиниваешься в разговор, а знаний то нет.

Здесь хоть Андрей Бондарев и чудит иногда , но у него хоть есть и полезное, а ты как дежурный по клещу всегда вклиниваешься в разговор, а знаний то нет.

Технология пчеловождения у многих слетная, как и организация гнездовой части пчелосемей.
Но спешу всем сообщить радостную новость-решение найдено

Становись в очередь, раскрой кошелку и растопырь уши

Она была такой или стала ?

Грядет переломный момент всех устоявшихся технологий содержания пчелиных семей. так или иначе связанных с целым веком рамочного издевательства над живыми организмами.
Пора товарищи переходить к пятому технологическому устою, так сказать более естественному развитию пчелиных семей, без излишнего вмешательства в их жизнь, приведшую с благими намерениями пчеловодов и смежных производств к замене естественной среды обитания на суррогаты, добытые человеком непонятно из каких веществ и упорно вносимых повсеместно в ульи, заставляя пчел жить и рождаться на бывших в употреблении, зачастую уже пропитанными за целый век токсичными химическими соединениями .

Токсичные вещества Накопились, а технология СТАЛА и все это продолжает усугубляться.

Кто не верит, предлагаю задуматься, оценить все КОМПЛЕКСНО.

Переход на колоды, и куда-нибудь дальше от полей, согласен, но если при этом пчелу не поменяете, проблемы останутся.

Поля никуда от нас не денутся, к сожалению, но на чистых простынях спать не то что приятнее, но и безопаснее!
И колодное пчеловодство себя изжило, неконкурентно оно


НУ найдем более устойчивую пчелу и что это даст? чуть дольше она отработает и все равно сойдет на нет, нашими действиями мы любую пчелу загоним в такие условия, что она не выживет!

Сами будете секвенировать ДНК? Можете читать информацию основанную на последовательности нуклеотидов?

Я сейчас открыл свою ссылку, у меня работает.

http://vizrspb.ru/structure/research/molec...-lab-staff.html

Из той ссылки, пока не могу отойти поэтому:
《Личинки медоносных пчел были более восприимчивы к A. fumigatus , когда количество маточного молочка снижается на 20%, что подчеркивает важность этого компонента рациона личинок, который содержит основные питательные вещества и антимикробные пептиды ( Foley et al., 2012 ; Bílikova et al. , 2015 ).》

Значить на меня уже вышли"!
Прикрепленное изображение: Открыть в новом окне

Я тебе новую ссылку дал на Настю, отпишись смог открыть?

Ничего удивительного. Отбирали разновозрастных пчел случайным образом, не учитывая наличие и развитие перитрофической мембраны. Пчелы получавшие в первые 10 дней жизни полноценное питание пыльцой с полленкитом формируют плотную многослойную перитрофическую мембану и микроспоридии не способны ее пробить. Летные пчелы постепенно теряют мембрану со всеми отрицательными последствиями.
Но им почему-то не приходит в голову эта простая функция, хотя в 90-х Исси Ирма Викторовна об этом знала. Парадокс и попадос.

Смотрите
https://www.elibrary.ru/author_items.asp?authorid=811541

Поэтому нозема формирует тандем с охротоксином, где охрик" первичен! Есси не верите, то спросите у ИИ!

Прикрепленное изображение: Открыть в новом окне
Значить не судьба!

Ну, то есть, вот два типичных белофрачных балабола. Почему? Да потому что все прекрасно знают, что в июле нормальный пв в улей не заглядывает, максимум магазины накидывает. И повлиять на засев матки он не может и этого не делает. А балаболу в белом фраке лишь бы чушь сморозить, натянуть лайковые перчатки и пойти насвистывая других уму-разуму учить, ребусы загадывать.



А чё тогда спрашиваешь - возил на анализ или как? Чтоб пробурчать - вы все такие бездари, а я в белом?



А ты бы при слете что повез?

Apidolog
Жуткая тишина наступила потому что клещ Варроа загнал все современные методы пчеловождения в тупик.Современные методы предполагают разведение как можно большего количества пчёл для получения наибольшего количества мёда и борьбу с роением,пчёл в таком случае получается много,все они коротко живущие 30 дней,с недостаточным жировым телом и идут на корм клещу.Тысячи лет люди занимались пчеловодством без рамок,пчёлы сами строили соты,матки сеяли в построенные соты,не больше и все пчёлы были роевыми-долгоживущими,откормленными лишним ММ,остающемся при кормлении личинок,такие ДЖ пчёлы сами борются с клещём без помощи пчеловода,вероятно за счёт мощного жирового тела.Вывод-выращивать ДЖ пчёл весь сезон и будет вам счастье.

Потому как опылителей-нэма и нашёл ещё 2-трупика пташек!

НЕ ВЕРЮ! Но лучше у шамана с бубном

Джинн20 Ересь пчеловодная, или глупость от недостаточной компетенции.

Если интересно, Виктор Андреев давал информацию по этому поводу по этой ссылке, сообщение 4.

https://pchelovod.info/https://pchelovod.info/index.php?showtopic=...t=0&p=3256189&#

Ну да, ну да
У вас имеется машина времени? И что, должны вам верить, потому что вы хороший человек?

1.Доступ к полному тексту открыт
FIRST EVALUATION OF THE VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE GENOME'S DNA REPLICATION GENES AS TARGETS FOR RNA INTERFERENCE-MEDIATED SUPPRESSION OF THE HONEY BEE APIS MELLIFERA NOSEMOSIS
Dolgikh V.V., Ignatieva A.N., Rumiantseva A.S., Timofeev S.A., Fadeev R.R., Bayazyt K.D.K.
Protistology. 2025. Т. 19. № 1. С. 3-14. 0
2.СПОСОБНОСТЬ К ЗАРАЖЕНИЮ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ КАК ПОКАЗАТЕЛЬ ЭКОЛОГИЧЕСКОЙ БЕЗОПАСНОСТИ ЭНТОМОПАТОГЕННЫХ МИКРОСПОРИДИЙ
Игнатьева А.Н.
НИР: грант № 24-26-00277. Российский научный фонд. 2024. 0
3.ПЕРСПЕКТИВЫ ИССЛЕДОВАНИЙ СПОСОБНОСТИ ЭНТОМОПАТОГЕННЫХ МИКРОСПОРИДИЙ ЗАРАЖАТЬ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ ЖИВОТНЫХ
Игнатьева А.Н., Румянцева А.С., Конончук А.Г.
В книге: V Всероссийский конгресс по защите растений. Сборник тезисов докладов Посвящается 300-летию Российской академии наук. Санкт-Петербург, 2024. С. 206. 0
4.НОВЫЕ ДАННЫЕ О ГОСТАЛЬНОЙ СПЕЦИФИЧНОСТИ МИКРОСПОРИДИЙ РОДА NOSEMA
Малыш С.М., Уткузова А.М., Игнатьева А.Н., Румянцева А.С., Конончук А.Г., Грушевая И.В.
В книге: V Всероссийский конгресс по защите растений. Сборник тезисов докладов Посвящается 300-летию Российской академии наук. Санкт-Петербург, 2024. С. 79. 0
5.НОВЫЕ ДАННЫЕ ПО ТЕСТИРОВАНИЮ МИКРОСПОРИДИЙ ПРОТИВ СИБИРСКОГО ШЕЛКОПРЯДА
Румянцева А.С., Малыш С.М., Игнатьева А.Н., Агеев А.А., Токарев Ю.С.
В книге: V Всероссийский конгресс по защите растений. Сборник тезисов докладов Посвящается 300-летию Российской академии наук. Санкт-Петербург, 2024. С. 86. 0
6.Полный текст доступен на внешнем сайте
MICROSPORIDIA-CYPOVIRUS INTERACTIONS DURING SIMULTANEOUS INFECTION OF THE TREE DEFOLIATOR DENDROLIMUS SIBIRICUS (LEPIDOPTERA: LASIOCAMPIDAE)
Rumiantseva A.S., Ageev A.A., Ignatieva A.N., Yakimova M.E., Kharlamova D.D., Martemyanov V.V., Tokarev Yu.S.
Journal of Invertebrate Pathology. 2024. Т. 207. С. 108199. 1
7.Полный текст доступен на внешнем сайте
A GENERAL AND EFFICIENT REPRESENTATION OF ANCESTRAL RECOMBINATION GRAPHS
Wong Ya., Ignatieva A., Koskela J., Gorjanc G., Wohns A.W., Kelleher J.
Genetics. 2024. 3
8.Полный текст доступен на внешнем сайте
CLASSES AND PHYLA OF THE KINGDOM FUNGI
Wijayawardene N.N., Hyde K.D., Mikhailov K.V., Péter G., Aptroot A., Pires-Zottarelli C.L.A., Goto B.T., Tokarev Yu.S., Haelewaters D., Karunarathna S.C., Kirk P.M., de A. Santiago A.L.C.M., Saxena R.K., Schoutteten N., Wimalasena M.K., Aleoshin V.V., Al-Hatmi A.M.S., Ariyawansa K.G.S.U., Assunção A.R., Bamunuarachchige T.C. et al.
Fungal Diversity. 2024. 7
9.ECOLOGICAL SAFETY OF INSECTICIDE BASED ON ENTOMOPATHOGENIC VIRUS DSCPV-1 FOR NONTARGET INVERTEBRATES
Belevitch O., Yurchenko Yu., Kharlamova D., Shatalova E., Agrikolyanskaya N., Subbotina A., Ignatieva A., Tokarev Yu., Martemyanov V.
Scientific Reports. 2024. Т. 14. № 1. С. 29093. 0
10.Доступ к полному тексту открыт
HORIZONTAL AND VERTICAL TRANSMISSION OF MICROSPORIDIA NOSEMA PYRAUSTA AND NOSEMA BOMBYCIS IN THE PREDATORY BUG PODISUS MACULIVENTRIS (HEMIPTERA: PENTATOMIDAE)
Rumiantseva A.S., Ignatieva A.N., Grushevaya I.V., Utkuzova A.M., Binitskaya N.V., Kononchuk A.G., Kozlova E.G., Khodzhash A.A., Tokarev Yu.S.
Acta Biologica Sibirica. 2024. № 10. С. 1625-1645. 0
11.МОЛЕКУЛЯРНЫЕ СТРАТЕГИИ БОРЬБЫ С МИКРОСПОРИДИЯМИ NOSEMA BOMBYCIS И VAIRIMORPHA CERANAE, ВНУТРИКЛЕТОЧНЫМИ ПАРАЗИТАМИ ШЕЛКОВИЧНОГО ЧЕРВЯ И МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ
Долгих В.В., Сендерский И.В., Тимофеев С.А., Игнатьева А.Н., Шухалова А.Г., Байазыт К.Д.К., Фадеев Р.Р., Кудрявцева Ю.С.
В книге: VII СЪЕЗД ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБЩЕСТВА: ИТОГИ И АКТУАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ. тезисы докладов: научное электронное издание. 2023. С. 101-103. 1
12.ВЗАИМООТНОШЕНИЯ МИКРОСПОРИДИЙ ЧЕШУЕКРЫЛЫХ НАСЕКОМЫХ С ИХ ЕСТЕСТВЕННЫМИ ВРАГАМИ
Игнатьева А.Н., Румянцева А.С., Уткузова А.М., Токарев Ю.С.
В книге: VII СЪЕЗД ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБЩЕСТВА: ИТОГИ И АКТУАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ. тезисы докладов: научное электронное издание. 2023. С. 123-124. 0
13.ПОИСК ЭНДОСИМБИОНТОВ У КОКЦИНЕЛЛИД
Конончук А.Г., Малыш С.М., Белякова Н.А., Илинский Ю.Ю., Рябинин А.С., Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С.
В книге: VII СЪЕЗД ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБЩЕСТВА: ИТОГИ И АКТУАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ. тезисы докладов: научное электронное издание. 2023. С. 161-162. 0
14.НОВЫЙ ИЗОЛЯТ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA SP. ИЗ ХЛОПКОВОЙ СОВКИ HELICOVERPA ARMIGERA
Малыш С.М., Киреева Д.С., Грушевая И.В., Уткузова А.М., Игнатьева А.Н., Конончук А.Г., Токарев Ю.С.
В книге: VII СЪЕЗД ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБЩЕСТВА: ИТОГИ И АКТУАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ. тезисы докладов: научное электронное издание. 2023. С. 208-210. 0
15.ИССЛЕДОВАНИЕ ИНФЕКЦИОННЫХ СВОЙСТВ НОВОГО ИЗОЛЯТА МИКРОСПОРИДИИ TUBULINOSEMA CF LOXOSTEGI
Румянцева А.С., Агеев А.А., Уткузова А.М., Киреева Д.С., Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С.
В книге: VII СЪЕЗД ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБЩЕСТВА: ИТОГИ И АКТУАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ. тезисы докладов: научное электронное издание. 2023. С. 303-304. 0
16.

ИЗУЧЕНИЕ ФАКТОРОВ, ВЛИЯЮЩИХ НА РАЗВИТИЕ НАЕЗДНИКА HABROBRACON HEBETOR В ЛАБОРАТОРНЫХ УСЛОВИЯХ
Уткузова А.М., Игнатьева А.Н., Черткова Е.А., Крюкова Н.А., Токарев Ю.С.
В книге: VII СЪЕЗД ПАРАЗИТОЛОГИЧЕСКОГО ОБЩЕСТВА: ИТОГИ И АКТУАЛЬНЫЕ ЗАДАЧИ. тезисы докладов: научное электронное издание. 2023. С. 363-364. 0
17.

RECOVERABILITY OF ANCESTRAL RECOMBINATION GRAPH TOPOLOGIES
Hayman E., Ignatieva A., Hein J.
Theoretical Population Biology. 2023. Т. 154. С. 27-39. 5
18.

АЗИАТСКИЙ НОЗЕМАТОЗ ПЧЕЛ, ВЫЗВАННЫЙ МИКРОСПОРИДИЕЙ NOSEMA (VAIRIMORPHA) CERANAE: СОВРЕМЕННЫЕ ПРЕДСТАВЛЕНИЯ, ПАТОГЕНЕЗ, ПРОФИЛАКТИКА, ДИАГНОСТИКА И ЛЕЧЕНИЕ ОБЗОР)
Тимофеев С.А., Игнатьева А.Н., Долгих В.В.
Сельскохозяйственная биология. 2023. Т. 58. № 2. С. 274-287. 2
19.

SUSCEPTIBILITY OF BOMBYX MORI LARVAE TO MICROSPORIDIA NOSEMA BOMBYCIS FROM THE SILKWORM AND NOSEMA SP. FROM THE COTTON BOLLWORM
Malysh S.М., Utkuzova A.M., Ignatieva A.N., Mirzakhodjaev B.A., Grushevaya I.V.
Plant Protection News. 2023. Т. 106. № 4. С. 210-214. 1
20.

SPORE YIELD OF THE MICROSPORIDIUM NOSEMA PYRAUSTA (PAILLOT) WEISER, 1961 IS INFLUENCED BY THE INSECT HOST REARING TEMPERATURE AND DIET COMPOSITION
Tokarev Yu.S., Ignatieva A.N., Grushevaya I.V., Kryukov V.Yu., Malysh Yu.M.
Invertebrate Zoology. 2023. Т. 20. № 1. С. 113-124. 1
21.

THE IMPACT OF A CYPOVIRUS ON PARENTAL AND FILIAL GENERATIONS OF LYMANTRIA DISPAR L
Akhanaev Y.B., Pavlushin S.V., Kharlamova D.D., Odnoprienko D., Subbotina A.O., Belousova I.A., Ignatieva A.N., Kononchuk A.G., Tokarev Y.S., Martemyanov V.V.
Insects. 2023. Т. 14. № 12. 1
22.

КОНСТРУИРОВАНИЕ, ОТБОР И АНАЛИЗ РЕКОМБИНАНТНЫХ ОДНОЦЕПОЧЕЧНЫХ АНТИТЕЛ, ИНГИБИРУЮЩИХ РАЗВИТИЕ МИКРОСПОРИДИЙ ОДОМАШНЕННЫХ НАСЕКОМЫХ
Долгих В.В., Сендерский И.В., Журавлев В.С., Тимофеев С.А., Игнатьева А.Н.
В книге: XVI съезд Русского энтомологического общества. Тезисы докладов. Москва, 2022. С. 108. 0
23.

БИОРАЗНООБРАЗИЕ МИКРОСПОРИДИЙ ЧЕШУЕКРЫЛЫХ ВРЕДИТЕЛЕЙ СЕМЕЙСТВА PIERIDAE (LEPIDOPTERA)
Киреева Д.С., Малыш С.М., Игнатьева А.Н., Исси И.В., Токарев Ю.С.
В книге: XVI съезд Русского энтомологического общества. Тезисы докладов. Москва, 2022. С. 111. 1
24.

ТЕСТИРОВАНИЕ МИКРОСПОРИДИЙ ПРОТИВ СИБИРСКОГО ШЕЛКОПРЯДА DENDROLIMUS SIBIRICUS TSCHTV. (LEPIDOPTERA: LASIOCAMPIDAE)
Румянцева А.С., Агеев А.А., Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С.
В книге: XVI съезд Русского энтомологического общества. Тезисы докладов. Москва, 2022. С. 135. 1
25.

ЛАБОРАТОРНОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ МИКРОСПОРИДИИ VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE В ИСКУССТВЕННО ЗАРАЖЕННЫХ РАБОЧИХ ПЧЕЛАХ
Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С., Долгих В.В.
В книге: XVI съезд Русского энтомологического общества. Тезисы докладов. Москва, 2022. С. 37. 0
26.

HETEROLOGOUS EXPRESSION OF SCFV FRAGMENT AGAINST VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE HEXOKINASE IN SF9 CELL CULTURE INHIBITS MICROSPORIDIA INTRACELLULAR GROWTH
Dolgikh V.V., Zhuravlyov V.S., Senderskiy I.V., Ignatieva A.N., Timofeev S.A., Seliverstova E.V.
Journal of Invertebrate Pathology. 2022. Т. 191. С. 107755. 7
27.

ONGOING RECOMBINATION IN SARS-COV-2 REVEALED THROUGH GENEALOGICAL RECONSTRUCTION
Ignatieva A., Jenkins P.A., Hein J.
Molecular Biology and Evolution. 2022. Т. 39. № 2. С. msac028. 24
28.

Доступ к полному тексту открыт
MOLECULAR DETECTION OF MICROSPORIDIA VAIRIMORPHA CERANAE AND NOSEMA BOMBYCIS GROWTH IN THE LEPIDOPTERAN SF9 CELL LINE
Dolgikh V.V., Senderskiy I.V., Zhuravlyov V.S., Ignatieva A.N., Timofeev S.A., Ismatullaeva D.A., Mirzakhodjaev B.A.
Protistology. 2022. Т. 16. № 1. С. 21-29. 5
29.

LABORATORY CULTIVATION OF VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE (MICROSPORIDIA: NOSEMATIDAE) IN ARTIFICIALLY INFECTED WORKER BEES
Ignatieva A.N., Timofeev S.A., Tokarev Yu.S., Dolgikh V.V.
Insects. 2022. Т. 13. № 12. С. 1092. 3
30.

Доступ к полному тексту открыт
ECOLOGICAL VS PHYSIOLOGICAL HOST SPECIFICITY: THE CASE OF THE MICROSPORIDIUM NOSEMA PYRAUSTA (PAILLOT) WEISER, 1961
Tokarev Yu.S., Kireeva D.S., Ignatieva A.N., Ageev A.A., Gerus A.V., Yaroslavtseva O.N., Kononchuk A.G., Malysh Ju.M.
Acta Biologica Sibirica. 2022. № 8. С. 297-316. 6
31.

Доступ к полному тексту закрыт
EXPRESSION OF SCFV-FRAGMENTS AGAINST VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE HEXOKINASE AND ATP/ADP CARRIERS SUPPRESS MICROSPORIDIA INTRACELLULAR DEVELOPMENT IN SF9 INSECT CELLS
Dolgikh V.V., Sendersky I.V., Timofeev S.A., Zhuravlev V.S., Ignatieva A.N., Kireeva D.S.
В книге: 2021 International Congress on Invertebrate Pathology and Microbial Control & 53rd Annual Meeting of the Society for Invertebrate Pathology. VIRTUAL MEETING. Centre-Val de Loire, FRANCE, 2021. С. 114. 0
32.

GENETIC DIVERSITY OF MICROSPORIDIA FROM LEPIDOPTERAN INSECTS IN RUSSIA AND NEIGHBORING COUNTRIES
Kireeva D.S., Ignatieva A.N., Issi I.V.
В книге: 2021 International Congress on Invertebrate Pathology and Microbial Control & 53rd Annual Meeting of the Society for Invertebrate Pathology. VIRTUAL MEETING. Centre-Val de Loire, FRANCE, 2021. С. 118. 0
33.

Публикация из списков цитируемой литературы EVIDENCE OF ONGOING RECOMBINATION IN SARS-COV-2 THROUGH GENEALOGICAL RECONSTRUCTION
Ignatieva A., Hein J., Jenkins P.A.
2021. 4
34.

Полный текст доступен на внешнем сайте
KWARG: PARSIMONIOUS RECONSTRUCTION OF ANCESTRAL RECOMBINATION GRAPHS WITH RECURRENT MUTATION
Ignatieva A., Lyngsø R.B., Jenkins P.A., Hein J.
Bioinformatics. 2021. Т. 37. № 19. С. 3277-3284. 12
35.

Доступ к полному тексту открыт
PRODUCTION OF POLYCLONAL ANTI-Β-TUBULIN ANTIBODIES AND IMMUNODETECTION OF VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE (OPISTHOSPORIDIA: MICROSPORIDIA) PROLIFERATIVE STAGES IN THE MIDGUTS OF APIS MELLIFERA AND IN THE SF9 CELL CULTURE
Senderskiy I.V., Ignatieva A.N., Kireeva D.S., Dolgikh V.V.
Protistology. 2021. Т. 15. № 1. С. 3-9. 2
36.

SUSCEPTIBILITY OF THE GYPSY MOTH LYMANTRIA DISPAR (LEPIDOPTERA: EREBIDAE) TO NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA: NOSEMATIDAE)
Kononchuk A.G., Ignatieva A.N., Tokarev Y.S., Martemyanov V.V., Belousova I.A., Inoue M.N.
Insects. 2021. Т. 12. № 5. 11
37.

Полный текст доступен на внешнем сайте
A CHARACTERISATION OF THE RECONSTRUCTED BIRTH–DEATH PROCESS THROUGH TIME RESCALING
Ignatieva A., Hein J., Jenkins P.A.
Theoretical Population Biology. 2020. Т. 134. С. 61-76. 4
38.

Доступ к полному тексту открыт
МОЛЕКУЛЯРНО-ГЕНЕТИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА МИКРОСПОРИДИЙ, СОБРАННЫХ В СЕРЕДИНЕ ПРОШЛОГО ВЕКА
Киреева Д.С., Игнатьева А.Н., Малыш С.М., Токарев Ю.С., Исси И.В.
Гены и Клетки. 2020. Т. 15. № S3. С. 190-191. 0
39.

VAIRIMORPHA (NOSEMA) CERANAE (OPISTHOSPORIDIA: MICROSPORIDIA) IN VITRO INFECTION OF SF9 INSECT CELL LINE AS AN EXPERIMENTAL MODEL OF PARASITE – HOST INTERRELATIONS
Sendersky I.V., Ignatieva A.N., Dolgikh V.V.
В сборнике: IV All-Russian Plant Protection Congress with international participation “Phytosanitary Technologies in Ensuring Independence and Competitiveness of the Agricultural Sector of Russia”. IV All-Russian Plant Protection Congress with international participation “Phytosanitary Technologies in Ensuring Independence and Competitiveness of the Agricultural Sector of Russia”. 2020. С. 00026. 3
40.

Доступ к полному тексту закрыт
PREVALENCE RATES OF MICROSPORIDIA IN LOCUSTS AND GRASSHOPPERS IN SOUTH-WESTERN RUSSIA
Gerus A.V., Ignatieva A.N., Tokarev Yu.S.
В сборнике: XI International Scientific and Practical Conference “Biological Plant Protection is the Basis of Agroecosystems Stabilization”. 2020. С. 00010. 1
41.

Доступ к полному тексту закрыт
SUSCEPTIBILITY OF THREE SPECIES OF THE GENUS OSTRINIA (LEPIDOPTERA: CRAMBIDAE) TO NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA: NOSEMATIDA)
Grushevaya I.V., Ignatieva A.N., Tokarev Yu.S.
В сборнике: XI International Scientific and Practical Conference “Biological Plant Protection is the Basis of Agroecosystems Stabilization”. 2020. С. 00040. 3
42.

ИЗУЧЕНИЕ ИНФЕКЦИОННЫХ СВОЙСТВ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA CERANAE И СОЗДАНИЕ СИСТЕМЫ ДЛЯ ИСКУССТВЕННОГО ЗАРАЖЕНИЯ ПЧЕЛЫ APIS MELLIFERA В ЛАБОРАТОРНЫХ УСЛОВИЯХ
Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С., Тимофеев С.А., Долгих В.В.
В книге: Школа по теоретической и морской паразитологии. Тезисы докладов VII Всероссийской конференции с международным участием. 2019. С. 16. 0
43.

ДЛИТЕЛЬНОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA СERANAE В ЛАБОРАТОРНЫХ УСЛОВИЯХ
Игнатьева А.Н., Киреева Д.С., Долгих В.В., Токарев Ю.С.
В книге: Фитосанитарные технологии в обеспечении независимости и конкурентоспособности АПК России. Сборник тезисов докладов. Редколлегия: Ганнибал Ф.Б. (главный редактор), Токарев Ю.С. (заместитель главного редактора), Алёхин В.Т., Афанасенко О.С., Белякова Н.А., Беньковская Г.В., Берестецкий А.О., Волкова Г.В., Глупов В.В.,Гричанов Е.А., Гультяева Е.И., Долгих В.В., Долженко В.И., Ибрагимов Т.З., Игнатов А.Н., Исмаилов В.Я., Кочетов А.В., Лысов А.К., Павлюшин В.А., Радченко Е.Е., Рогожин Е.А., Сергеев М.Г., Спиридонов Ю.Я., Сухорученко Г.И., Фролов А.Н., Хлёсткина Е.К., 2019. С. 213. 0
44.

СОЗДАНИЕ ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНОЙ МОДЕЛИ ПАРАЗИТО-ХОЗЯИННЫХ ОТНОШЕНИЙ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA СERANAE С КУЛЬТУРОЙ КЛЕТОК НАСЕКОМЫХ SF9
Сендерский И.В., Игнатьева А.Н., Долгих В.В.
В книге: Фитосанитарные технологии в обеспечении независимости и конкурентоспособности АПК России. Сборник тезисов докладов. Редколлегия: Ганнибал Ф.Б. (главный редактор), Токарев Ю.С. (заместитель главного редактора), Алёхин В.Т., Афанасенко О.С., Белякова Н.А., Беньковская Г.В., Берестецкий А.О., Волкова Г.В., Глупов В.В.,Гричанов Е.А., Гультяева Е.И., Долгих В.В., Долженко В.И., Ибрагимов Т.З., Игнатов А.Н., Исмаилов В.Я., Кочетов А.В., Лысов А.К., Павлюшин В.А., Радченко Е.Е., Рогожин Е.А., Сергеев М.Г., Спиридонов Ю.Я., Сухорученко Г.И., Фролов А.Н., Хлёсткина Е.К., 2019. С. 220. 0
45.

Доступ к полному тексту открыт
СЕКРЕТОРНЫЕ БЕЛКИ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA CERANAE КАК ИНСТРУМЕНТ ВОЗДЕЙСТВИЯ НА МЕТАБОЛИЧЕСКИЕ И ЗАЩИТНЫЕ ПРОЦЕССЫ МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ APIS MELLIFERA
Тимофеев С.А., Журавлев В.С., Игнатьева А.Н., Долгих В.В.
В книге: Школа по теоретической и морской паразитологии. Тезисы докладов VII Всероссийской конференции с международным участием. 2019. С. 26. 0
46.

HEXOKINASE AS A VERSATILE MOLECULAR GENETIC MARKER FOR MICROSPORIDIA
Tokarev Y.S., Timofeev S.A., Malysh J.M., Tsarev A.A., Ignatieva A.N., Dolgikh V.V., Tomilova O.G.
Parasitology. 2019. Т. 146. № 4. С. 472-478. 12
47.

INFECTION OF CHORTHIPPUS LORATUS (ORTHOPTERA: ACRIDIDAE) WITH LIEBERMANNIA SP. (MICROSPORIDIA) IN SOUTH-WESTERN RUSSIA
Ignatieva A.N., Gerus A.V., Senderskiy I.V., Malysh S.M., Dolzhenko V.I., Tokarev Y.S.
Journal of Eukaryotic Microbiology. 2019. Т. 66. № 4. С. 680-683. 3
48.

Доступ к полному тексту закрыт
КУЛЬТИВИРОВАНИЕ МИКРОСПОРИДИЙ В ЧЕШУЕКРЫЛЫХ НАСЕКОМЫХ
Малыш Ю.М., Игнатьева А.Н., Володарцева Ю.В., Токарев Ю.С.
В книге: Современная паразитология-основные тренды и вызовы. Материалы VI Съезда Паразитологического общества. Санкт-Петербург, 2018. С. 154. 1
49.

Доступ к полному тексту закрыт
ЭЛЕМЕНТЫ ТЕХНОЛОГИИ МАССОВОГО РАЗВЕДЕНИЯ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA PYRAUSTA
Малыш Ю.М., Игнатьева А.Н., Володарцева Ю.В., Токарев Ю.С.
В книге: Plants and microbes: the future of biotechnology. Abstract book of International Scientific Conference PLAMIC2018. 2018. С. 188. 1
50.

Доступ к полному тексту закрыт
МОЛЕКУЛЯРНЫЕ ОСНОВЫ ВОЗДЕЙСТВИЯ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA CERANAE НА МЕТАБОЛИЧЕСКИЕ И ЗАЩИТНЫЕ ПРОЦЕССЫ МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ APIS MELLIFERA
Тимофеев С.А., Царев А.А., Игнатьева А.Н., Долгих В.В.
В книге: Современная паразитология-основные тренды и вызовы. Материалы VI Съезда Паразитологического общества. Санкт-Петербург, 2018. С. 239. 0
51.

Доступ к полному тексту закрыт
ДИМОРФИЗМ СПОР NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA, NOSEMATIDAE)
Грушевая И.В., Игнатьева А.Н., Малыш С.М., Сендерский И.В., Томилова О.Г., Зубарев И.В., Конончук А.Г.
В книге: Современная паразитология-основные тренды и вызовы. Материалы VI Съезда Паразитологического общества. Санкт-Петербург, 2018. С. 68. 1
52.

Доступ к полному тексту закрыт
НОВЫЕ ДАННЫЕ О РАСПРОСТРАНЕННОСТИ МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA CERANAE НА ТЕРРИТОРИИ РОССИИ
Игнатьева А.Н., Царев А.А., Бахарев К.С., Тимофеев С.А.
В книге: Современная паразитология-основные тренды и вызовы. Материалы VI Съезда Паразитологического общества. Санкт-Петербург, 2018. С. 96. 0
53.

NATURAL INFECTION OF THE BEET WEBWORM LOXOSTEGE STICTICALIS L. (LEPIDOPTERA: CRAMBIDAE) WITH THREE MICROSPORIDIA AND HOST SWITCHING IN NOSEMA CERANAE
Malysh J.M., Ignatieva A.N., Frolov A.N., Tokarev Y.S., Artokhin K.S.
Parasitology Research. 2018. Т. 117. № 9. С. 3039-3044. 19
54.

GREATER WAX MOTH GALLERIA MELLONELLA (LEPIDOPTERA: PYRALIDAE) AS A RESISTANT MODEL HOST FOR NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA: NOSEMATIDAE)
Tokarev Y.S., Ignatieva A.N., Grizanova E.V., Dubovskiy I.M.
Journal of Invertebrate Pathology. 2018. Т. 157. С. 1-3. 9
55.

DETECTION OF TWO MICROSPORIDIA PATHOGENS OF THE EUROPEAN HONEY BEE APIS MELLIFERA (INSECTA: APIDAE) IN WESTERN SIBERIA
Tokarev Yu.S., Zinatullina Z.Ya., Ignateva A.N., Zhigileva O.N., Malysh Yu.M., Sokolova Yu.Y.
Acta Parasitologica. 2018. № 63 (4). С. 728-732. 16
56.

SPORE DIMORPHISM IN NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA, NOSEMATIDAE): FROM MORPHOLOGICAL EVIDENCE TO MOLECULAR GENETIC VERIFICATION
Grushevaya I.V., Ignatieva A.N., Malysh S.M., Senderskiy I.V., Zubarev I.V., Kononchuk A.G.
Acta Protozoologica. 2018. Т. 57. № 1. С. 49-52. 17
57.

Доступ к полному тексту открыт
ГЕНЕТИЧЕСКИЙ ПОЛИМОРФИЗМ ПРИРОДНЫХ ИЗОЛЯТОВ NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA: NOSEMATIDAE)
Грушевая И.В., Игнатьева А.Н., Малыш Ю.М., Трепашко Л.И., Токарев Ю.С., Фролов А.Н.
Экологическая генетика. 2017. Т. 15. № 1. С. 38-43.

Версии: GENETIC POLYMORPHISM OF NATURAL ISOLATES OF NOSEMA PYRAUSTA (MICROSPORIDIA: NOSEMATIDAE)
Grushevaya I.V., Ignatieva A.N., Malysh J.M., Tokarev Y.S., Frolov A.N., Trepashko L.I.
Russian Journal of Genetics: Applied Research. 2018. Т. 8. № 2. С. 135-139.

4
58.

Полный текст доступен на внешнем сайте
EXPERIMENTAL INFECTION OF LOXOSTEGE STICTICALIS (LEPIDOPTERA: PYRALOIDEA) WITH MICROSPORIDIA
Malysh J., Ignatieva A., Grushevaya I., Tokarev Y., Frolov A.
В книге: International Congress on Invertebrate Pathology and Microbial Control. 49th Annual Meeting of the Society for Invertebrate Pathology. Vinci Centre International de Congrès. 2016. С. 115-116. 0
59.

ГЕНЕТИЧЕСКИЙ ПОЛИМОРФИЗМ МИКРОСПОРИДИЙ РОДА NOSEMA
Малыш Ю.М., Грушевая И.В., Игнатьева А.Н., Фролов А.Н., Токарев Ю.С., Исси И.В.
В сборнике: Современные проблемы теоретической и морской паразитологии. сборник научных статей. Севастополь, 2016. С. 151-152. 0
60.

ОСОБЕННОСТИ ФУНКЦИОНИРОВАНИЯ СИСТЕМЫ ЭНЕРГЕТИЧЕСКОГО МЕТАБОЛИЗМА У НАЗЕМНЫХ МИКРОСПОРИДИЙ
Тимофеев С.А., Сендерский И.В., Царев А.А., Игнатьева А.Н., Долгих В.В.
В книге: БИОЛОГИЯ- НАУКА XXI ВЕКА. 20-я Международная Пущинская школа-конференция молодых ученых. 2016. С. 191. 0
61.

ОЦЕНКА ВОСПРИИМЧИВОСТИ GALLERIA MELLONELLA (LEPIDOPTERA: PYRALOIDEA) К ЗАРАЖЕНИЮ ЭНТОМОПАТОГЕННЫМИ МИКРОСПОРИДИЯМИ ПЯТИ ВИДОВ
Игнатьева А.Н., Воронцова Я.Л., Ярославцева О.Н., Грушевая И.В., Токарев Ю.С.
Вестник защиты растений. 2016. № 3 (89). С. 76-77. 1
62.

ВИДОВОЕ РАЗНООБРАЗИЕ И ГЕНЕТИЧЕСКИЙ ПОЛИМОРФИЗМ ЭНТОМОПАТОГЕННЫХ ГРИБОВ РОДА LECANICILLIUM
Митина Г.В., Первушин А.Л., Игнатьева А.Н., Чоглокова А.А.
В сборнике: Биоразнообразие и экология грибов и грибоподобных организмов северной Евразии. материалы Всероссийской конференции с международным участием. 2015. С. 161-163. 0
63.

Доступ к полному тексту открыт
ПРОБЛЕМЫ ДИАГНОСТИКИ МИКРОСПОРИДИЙ - ПАРАЗИТОВ МЕДОНОСНЫХ ПЧЁЛ
Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С.
Проблемы современной науки и образования. 2015. № 12 (42). С. 55-58. 2
64.

ПОЛИМОРФИЗМ НУКЛЕОТИДНОЙ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТИ МИТОХОНДРИАЛЬНОГО ГЕНА COX1 В ПРИРОДНЫХ ПОПУЛЯЦИЯХ ЛУГОВОГО МОТЫЛЬКА
Малыш Ю.М., Аханаев Ю.Б., Токарев Ю.С., Игнатьева А.Н., Фролов А.Н.
В сборнике: Научное обеспечение развития АПК в условиях реформирования. сборник научных трудов Международной научно-практической конференции. 2013. С. 78-80. 3
65.

ДИФФЕРЕНЦИАЛЬНАЯ ДИАГНОСТИКА ВОЗБУДИТЕЛЕЙ НОЗЕМАТОЗА ПЧЁЛ
Зинатуллина З.Я., Жигилева О.Н., Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С.
Ученые записки Казанской академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2013. Т. 214. С. 190-194. 5
66.

ВЛИЯНИЕ ТЕМПЕРАТУРНЫХ РЕЖИМОВ НА ИНФЕКЦИОННОСТЬ СПОР NOSEMA APIS И NOSEMA CERANAE - ВОЗБУДИТЕЛЕЙ НОЗЕМАТОЗА МЕДОНОСНЫХ ПЧЕЛ
Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С., Зинатуллина З.Я.
Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2013. № 31. С. 82-85. 0
67.

РАСПРОСТРАНЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ НОЗЕМАТОЗА МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ В ЕВРОПЕЙСКОЙ ЧАСТИ РОССИИ
Игнатьева А.Н., Зинатуллина З.Я., Токарев Ю.С.
В сборнике: Инфекционная патология членистоногих. Материалы международной молодежной конференции. 2012. С. 24-27. 1
68.

РАСПРОСТРАНЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ НОЗЕМАТОЗА МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ В ЕВРОПЕЙСКОЙ ЧАСТИ РОССИИ
Игнатьева А.Н., Зинатуллина З.Я., Токарев Ю.С.
В сборнике: Развитие АПК в свете инновационных идей молодых ученых. Сборник научных трудов Международной научной конференции аспирантов и молодых ученых. 2012. С. 68-72. 1
69.

НОЗЕМАТОЗ МЕДОНОСНЫХ ПЧЕЛ НА ПАСЕКАХ РОССИИ
Зинатуллина З.Я., Жигилева О.Н., Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С.
В сборнике: Российское пчеловодство на пути вступления в ВТО. Международная научно-практическая конференция в рамках III международного форума пчеловодов "Медовый мир". Правительство Ярославской области; мэрия г. Ярославля; Выставочная компания "Узорочье"; Комитет по аграрным вопросам Государственной Думы РФ; ГНУ НИИ пчеловодства Россельхозакадемии; ФГОУ ВПО "Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии им. К.И. Скрябина; Ярославское общество пчеловодов "Ярославский пасечник"; Рязанская областная общественная организация "Общество апитерапевтов"; АНО "Доверие". 2012. С. 72-75. 4
70.

РАСПРОСТРАНЕНИЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ НОЗЕМАТОЗА МЕДОНОСНЫХ ПЧЕЛ НА ПАСЕКАХ ТЮМЕНСКОЙ ОБЛАСТИ
Зинатуллина З.Я., Игнатьева А.Н., Жигилева О.Н., Токарев Ю.С.
В сборнике: Актуальные проблемы инфекционных болезней молодняка и других возрастных групп сельскохозяйственных животных, рыб и пчел. Международная научно-практическая конференция, посвященная 50-летию со дня основания лаборатории лейкозологии, лаборатории ихтиопатологии и отдела охраны полезной энтемофауны. 2011. С. 147-150. 0
71.

"АЗИАТСКИЙ" НОЗЕМАТОЗ В РОССИИ
Зинатуллина З.Я., Игнатьева А.Н., Жигилева О.Н., Токарев Ю.С.
Пчеловодство. 2011. № 10. С. 24-26. 26
72.

ОПТИКО-МИКРОСКОПИЧЕСКАЯ ДИАГНОСТИКА МИКРОСПОРИДИЙ – ПАРАЗИТОВ ШМЕЛЕЙ В ЛЕНИНГРАДСКОЙ ОБЛАСТИ
Демьянова Е.П., Игнатьева А.Н., Соколова Ю.Я., Королько Р.Ю., Горбунов П.С., Токарев Ю.С.
В сборнике: ТЕОРЕТИЧЕСКИЕ И ПРАКТИЧЕСКИЕ ПРОБЛЕМЫ ПАРАЗИТОЛОГИИ. Материалы Международной научной конференции. Редколлегия: С.О. Мовсесян, С.В. Зиновьева, А.Н. Пельгунов, С.Э. Спиридонов. 2010. С. 112-115. 1
73.

ULTRASTRUCTURE AND MOLECULAR PHYLOGENY OF ANISOFILARIATA CHIRONOMI G.N. SP.N. (MICROSPORIDIA: TERRESPORIDIA) FROM CHIRONOMUS PLUMOSUS L. (DIPTERA: CHIRONOMIDAE)
Tokarev Y.S., Dolgikh V.V., Pavlova O.A., Ignatieva A.N., Issi I.V., Voronin V.N., Seliverstova E.V.
Parasitology Research. 2010. Т. 107. № 1. С. 39-46. 17
74.

МОЛЕКУЛЯРНАЯ ДИАГНОСТИКА НОЗЕМАТОЗА
Токарев Ю.С., Игнатьева А.Н., Зинатуллина З.Я.
Пчеловодство. 2010. № 5. С. 18-19. 15
75.

ВИДОВОЕ РАЗНООБРАЗИЕ ВОЗБУДИТЕЛЕЙ НОЗЕМАТОЗА МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ
Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С., Зинатуллина З.Я.
Известия Санкт-Петербургского государственного аграрного университета. 2010. № 20. С. 61-64. 1
76.

МОЛЕКУЛЯРНАЯ ДИАГНОСТИКА МИКРОСПОРИДИИ NOSEMA SP. (MICROSPORIDIA, NOSEMATIDAE) -ПАРАЗИТА МЕДОНОСНОЙ ПЧЕЛЫ APIS MELLIFERA L
Игнатьева А.Н., Токарев Ю.С., Горбунов П.С.
В сборнике: Функциональная морфология, экология и жизненные циклы животных. сборник научных трудов. Российский государственный педагогический университет имени А. И. Герцена, Кафедра зоологии; Редкол.: Г. Л. Атаев и др., Санкт-Петербург, 2008. С. 50-54.

Попробуй через поисковик ВИЗР - Всероссийский Научно-исследовательский институт защиты растений.

Вижу что все получилось.

Пасечник вот что значить твои три года пчеловодства против моих более 60 как познакомился со пчелами.

А чтобы ты понял что там ни чего не найдут, мне то этого не надо я и так все знаю.

Исидор-49
Может быть ересь,может быть глупость,но шесть сезонов без обработки подтверждают существование ДЖ пчёл и их жирового тела,тем более за счёт изоляции матки и отсутствия летних не нужных поколений пчёл прибавка в 30 кг мёда подтверждает мою ересь,а ещё я маток изолирую в бесплатном бутылочном Изоляторе-нуклеусе Джинн,который после изоляции со старой маткой и ДЖ пчёлами идёт на продажу как без сотовый пакет,да ещё 2 серии маточников получаю за время изоляции,действительно придурок,зачем я это делаю?

Если ты себя причисляешь к нормальным пчеловодам, то спрашивается почему у тебя в начале августа всего две рамки расплода?

А откуда нормальный пчеловод знает что надо накидывать магазины, а может и не магазины накидывать, а что то другое надо делать?

Что бы у тебя от простых действий не возникало чувство ребусов "Учись пчеловодству настоящим образом", возьми учебник по пчеловодству и учебник по Биологии пчелы и тебе откроется дивный мир пчелы и ребусы окажутся раскрытой книгой.

https://www.mdpi.com/1422-0067/26/19/9438

https://www.mdpi.com/1422-0067/26/17/8258

https://pchelovod.info/https://pchelovod.info/index.php?showtopic=43416&st=855
Интересно было раньше с ним пообщаться и здесь на форуме и по Скайпу.

volmar_georgЕсли у вас есть пчёлы можете проверить сами,я помогу,подскажу.

Интересные работы. Но! Относится к позвоночным. Деградация муцина? Предположительно. Связи с микроспоридиями не прослеживается не только у пчел, но и у позвоночных. Если ошибаюсь поправте

Он там даже не вник, там было написано, что если расплода нет с
июля семья может перезимовать. Что я и подтвердил на своем опыте.

Моим пчелам и без подсказок хорошо живется своим умом

Немного вернёмся назад и отматаем КПС немножко назад! Итак, жара, засуха, растение вянет и трескается, повреждается вредителями, через раны то и норовятся проникнуть фитопатогенные фунги...
Почему и как растение выделяет и повышает фитоалексины супротив вредителей грибков?
Синтез фитоалексинов у растений — это индуцированный защитный ответ, который зависит от воздействия стрессовых факторов, а также от генотипа самого растения.
Синтез этих низкомолекулярных антибиотических веществ, которые обычно отсутствуют или присутствуют в очень малых количествах в здоровых тканях, запускается в ответ на:
Биотические стрессоры:
Инфекция патогенами (грибами, бактериями, вирусами). Это основной и самый мощный индуктор.
Контакт с элиситорами – сигнальными молекулами, которые могут быть производными:
Патогена (например, компоненты клеточной стенки грибов или бактерий).

Растения-хозяина (например, олигосахариды, образующиеся при разрушении клеточных стенок растения патогеном). Эти сигналы диффундируют к соседним, еще живым клеткам и запускают защитную реакцию.
Абиотические стрессоры:
Повреждение тканей (механические травмы).
Воздействие химических веществ (например, ионы тяжелых металлов, фтористый натрий, соли меди, ультрафиолетовое излучение).
Генотип растения:

Скорость и сила формирования фитоалексинов определяется генотипом растения. Устойчивые сорта часто характеризуются более быстрой и мощной реакцией синтеза фитоалексинов в месте инфицирования, по сравнению с восприимчивыми.

Синтез фитоалексинов происходит de novo (заново) в живых растительных клетках, граничащих с очагом поражения (некротическими клетками).
Для чего нужны фитоалексины
Основное назначение фитоалексинов — это обеспечение иммунитета и устойчивости растения к патогенам. Они являются важным, часто третьим кругом обороны, индуцируемым только в ответ на атаку.
Их ключевые функции:
Прямое антимикробное действие: Фитоалексины обладают токсичностью для широкого спектра фитопатогенов (грибов, бактерий). Они подавляют их рост, прорастание спор и могут вызывать гибель.
Защита от проникновения: Они накапливаются в некротизированных и окружающих их живых клетках, создавая химический барьер, который препятствует дальнейшему распространению патогена по тканям.
Системный ответ: Фитоалексины участвуют в формировании как видового иммунитета (защита от неспециализированных патогенов), так и сортовой устойчивости к специализированным патогенам.
Дезактивация ферментов патогена: Некоторые фитоалексины могут инактивировать экзоферменты, выделяемые патогенами для разрушения.

Второй круг обороны: Иммунитет, запускаемый Паттернами (PTI)
Если патогену удается преодолеть первый (структурный) барьер, растение активирует индуцированный иммунный ответ. Это неспецифическая система распознавания.

Распознавание: Растительные клетки используют рецепторы распознавания паттернов (PRR), расположенные на клеточной мембране, для обнаружения общих молекулярных структур, характерных для целых классов микроорганизмов, но отсутствующих у самого растения.

Эти общие структуры называются PAMP (Pathogen-Associated Molecular Patterns) или MAMP (Microbe-Associated Molecular Patterns), например, бактериальный флагеллин или грибной хитин.

Ответ (PTI – Pattern-Triggered Immunity): Распознавание PAMP/MAMP запускает первый эшелон активной защиты:
Укрепление клеточной стенки (отложение каллозы).
Производство активных форм кислорода (кислородный взрыв).
Синтез антимикробных белков (PR-белков) и некоторых фитоалексинов.
Запуск сигнальных путей (например, салициловой кислоты).
Третий круг обороны: Иммунитет, запускаемый Эффекторами (ETI)
Некоторые патогены развили способность вводить в клетку растения специальные белки — эффекторы — чтобы подавить второй круг обороны (PTI). Третий круг обороны — это специфический ответ на эти эффекторы.

Распознавание: Растение использует внутриклеточные рецепторы (NLR), чтобы опосредованно или напрямую распознать эти специфические эффекторы патогена.

Эта система распознавания часто работает по модели "ген на ген" (ген устойчивости (R-ген) в растении против гена авирулентности (Avr-ген) в патогене).

Ответ (ETI – Effector-Triggered Immunity): Распознавание эффектора запускает второй эшелон активной защиты, который является более сильным, быстрым и локализованным, чем PTI:

Реакция сверхчувствительности (Hypersensitive Response, HR): Быстрая, запрограммированная гибель небольшого количества инфицированных клеток вокруг места проникновения. Это приводит к локализации и голоданию патогена, особенно биотрофного.

Массовый синтез фитоалексинов: Продукция высоких концентраций мощных фитоалексинов в зоне HR.

Системная приобретенная устойчивость (SAR): Активация широкоспектральной и долговременной устойчивости во всей системе растения.》
--------
Вот здесь я выделил 《Синтез антимикробных белков (PR-белков) и некоторых фитоалексинов》в больших дозах, что может быть вредно для пчёл! Значить некоторые растения/особенно которые не имеют историю коэволюции с пчёлами/ через 《рецепторы распознавания паттернов (PRR)》 ошибочно принимают хитиновый покров пчёл за хитиновую оболочку фуног и начинают "операцию по гноблению вражья""

Далее, в ответ на повышенную хим.атаку, фитопатогенная фунга прицепившись плотно также начинает подавление растения и проникновение, самый лёгкий путь через бутон-пыльники-тычинку-пестик цветка! Прилетает пчела и копошится в пыльце, фунга по рецепторам распознаёт его как конкурента опять же по хитиновому следу/запаху и давай тоже гнобить"!
Что имеем в остатке: тот начинает гнобить этого а заодно и того, а этот гнобит того и другого, в общем вы поняли!

Что я хотел сказать ув.Волмар, фунги ведь нас не знают и не видят в нас конкурента! А микотоксины как Вы знаете оружие в конкурентной борьбе за выживание в нише!
Для фуног конкуренты насекомые! А мы и травоядные млекопитающие - пострадальцы! У нас нет хитина чтобы нас распознали!
Поэтому что для нас вредно, то пчёлам - слёт!